Определение углеводов: Углеводы – классификация и свойства в таблице, общая формула (химия, 10 класс)

ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ УГЛЕВОДОВ В ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТАХ И НАПИТКАХ | Коренман

1. Траубенберг С.Е., Осташенкова Н.В., Вяльцева И.В., Кобелева И.Б. и др. Пищевая химия (Углеводы, минеральные вещества, вода): учеб. пособие. М.: Изд. комплекс МГУПП, 2003. 122 с. Traubenberg S.E., Ostashenkova N.V., Vial’tseva I.V., Kobeleva I.B. et al. Pishhevaia khimiia (Uglevody, mineral’nye veshchestva, voda) [Food Chemistry (carbohydrates, minerals , water)]. Moscow, Izd.compleks MGUPP, 2003. 122 p.(In Russ.).

2. ГОСТ Р 19792-2001.Мед натуральный. Технические условия. М.: Стандартинформ, 2001. 27 с. GOST R 19792-2001. Med natural’nyi. Tekhnicheskie usloviya [Honey. Specifications.]. Moscow, Standartinform, 2001. 27 p.(In Russ.).

3. Нечаев А.П., Кочеткова А. А., Траубенберг С.Е. Пищевая химия. Санкт-Петербург: ГИОРД, 2001. 580 с. Nechaev A.P., Kochetkova A.A., Traubenberg S.E. Pishchevaia khimiia [Food Chemistry]. Sent-Petersburg, GIORD, 2001. 580 p. (In Russ.).

4. Петров А.А., Бальян Х.В., Трощенко А.Т. Органическая химия. СПб: Иван Федоров, 2003. 624 с. Petrov A.A., Balian H.V., Troshchenko A.T. Organicheskaia khimiia [Organic Chemistry]. Sent-Petersburg, Ivan Fedorov, 2003. 624 p. (In Russ.).

5. DeVrese M. Milk after infancy, dealing with lactose // On Food and Cooking, 2004, vol. 45, no. 5, pp. 14–15. DeVrese M. Milk after infancy, dealing with lactose // On Food and Cooking, 2004, vol. 45, no. 5, pp. 14–15.

6. Коренман Я.И., Бычкова А.А., Чикалова А.М., Ким К.Б. Извлечение фруктозы из водных растворов алифатическими спиртами С2 — С6 // Вестник ВГУ, Серия: Химия, Биология, Фармация. 2011. №1. С. 44–48. Korenman Ia.I., Bychkova A.A., Chikalova A.M., Kim K.B. Removing fructose from aqueous solutions aliphatic alcohols C2 — C6. Vestnik VGU, Seriia: Khimiia, Biologiia, Farmatsiia. [Bulletin of VSU, Series: Chemistry, Biology, Pharmacy], 2011, no. 1, pp. 44-48. (In Russ.).

7. Бычкова А.А., Чикалова А.М., Коренман Я.И., Мокшина Н.Я. Закономерности экстракции глюкозы двойными и тройными смесями гидрофильных растворителей // В мире научных открытий. 2011. Т. 17. № 5. С. 289–296. Bychkova A.A., Chikalova A.M., Korenman Ia.I., Mokshina N.Ia. Laws of glucose extraction double and triple hydrophilic solvent mixtures. V mire nauchnykh otkrytii. [In the world of scientific discoveries], 2011, vol. 17, no. 5, pp. 289-296. (In Russ.).

8. Коренман Я.И., Мокшина Н.Я., Бычкова А.А., Попова Н.Н. Экстракционно-потенциометрическое определение молочного сахара и продуктов его распада в водных средах // Материалы сб. «Химия и химическая технология», Караганда, Казахстан. 2012. Т. 2. С. 120−123. Korenman Ia.I., Mokshina N.Ia., Bychkova A.A., Popova N.N. Extraction- potentiometric determination of lactose and its degradation products in aqueous media. Materialy sb. «Khimiia i khimicheskaia tekhnologiia» [Materials comp. «Chemistry and chemical technology»]. Karaganda, 2012. vol. 2, pp. 120-123. (In Russ.).

Углеводы определение — Справочник химика 21

    Измерение спектров дисперсии оптического вращения (ДОВ) и кругового дихроизма (КД) получило широкое распространение как метод конформационного анализа оптически активных соединений. Особенно методы ДОВ и КД используются в органической химии, биохимии, энзимологии и молекулярной биологии. Данными методами исследуются белки, аминокислоты, нуклеиновые кислоты, стероиды, углеводы и полисахариды, вирусы, митохондрии, рибосомы, фармакологические средства, синтетические полимеры, координационные соединения, неорганические и редкоземельные комплексы, кристаллы, суопензии и пленки и т. п. и решаются следующие задачи 1) определение по эмпирическим пра вилам конформации и ее изменений под действием различных физико-химических воздействий 2) изучение механизма и кинетики химических реакций (особенно ферментативных) 3) получение стереохимических характеристик 4) измерение концентраций оптически активных веществ 5) определение спиральности макромолекул 6) получение электронных характеристик молекул 7) исследование влияния низких температур на конформацию соединений 8) влияние фазовых переходов типа твердое тело — жидкость — газ на изменение структуры. [c.32]







    Для углеводов существуют некоторые специфические пространственные эффекты, которые должны быть приняты во внимание при определении энергетически наиболее выгодной конформации. Первый среди них — аномерный эффект. Как показал опыт, аномер с аксиальным замести- [c.143]

    К. Бауэр. Анализ органических соединений. Издатинлит, 1953, (488 стр. ), В книге содержится описание методов открытия, идентификации и количественного определения важнейших классов и отдельных представителей органических соединений углеводородов, галогенопроизводных, спиртов, фенолов, эфиров, нитропроизводных, аминов, альдегидов, кетонов, кислот, углеводов, жиров, алкалоидов и др. По каждому классу дан обзор общих групповых реакций и описаны специфические методы открытия и количественного определения главных представителей класса. Каждая глава снабжена списком литературы. [c.492]

    Медь, отложенная на окиси церия и двуокиси кремния, применялась [45] в реакциях расщепления, изомеризации, образования кислот, гидрогенизации и гидратации. Определенный интерес представляет сопоставление активности этого катализатора при гидрировании и гидрогенолизе различных углеводов (сахарозы, глюкозы, фруктозы и др.). Глюкоза и фруктоза начинают гидрироваться при 150°С, сахароза — при 180°С, сорбит и глицерин — выше 200 °С. В отсутствие гомогенных добавок катализатор преимущественно ведет процесс гидрирования, в присутствии таких добавок — гидрогенолиз, причем степень расщепления зависит как от природы углевода, так и от количества добавки (гидроокиси кальция).  [c.46]

    УГЛЕВОДЫ Определение свободного сахара в крови [c.202]

    Фотосинтез осуществляют все зеленые растения, сине-зеленые водоросли и некоторые группы бактерий. Существует вполне определенное соответствие между спектром поглощения отдельными элементами растений и спектром излучения Солнца. Реакция фотосинтеза имеет большую эффективность от 30 до 60% поглощенной энергии используется для образования углеводов и кислорода. [c.189]

    К (для ГЛЮКОЗЫ, фруктозы и сахарозы при трех температурах). Там же приведены величины гидратных чисел углеводов, определенные из данных о скорости ультразвука [82] по формуле  [c.97]

    Вторая группа. Определение углеводов молока и процента воды [c.266]

    Затем при развертке 250 Гц или менее записывают область протонов, находящихся в кольце или в цепи, чтобы более точно измерить константы снин-спинового взаимодействия или расщепление сигналов. В конформационном анализе углеводов определенный интерес представляет измерение малых расщеплений (возможно, констант дальнего спин-спинового взаимодействия). Для этого необходимо поддерживать хорошую однородность поля, что достигается использованием чистых образцов и тщательной подстройкой градиентов поля. [c.390]

    Часто люди пугают термины углевод и углеводород . Дайте определение и приведите примеры соединений каждого класса. В чем их сходство Различия  [c.251]

    Часть 3. Определение полочного белка, углеводов и содержания воды [c.265]

    Типичные коллоидные системы чувствительны к действию электролитов. Однако при введении в них определенных высокомолекулярных веществ и образовании на поверхности частичек соответствующего адсорбционного слоя устойчивость гидрозолей может быть значительно повышена. Такое явление получило название коллоидной защиты. Веществами, способными обусловливать коллоидную защиту, являются белки, углеводы, пектины, а для систем с неводной дисперсной средой — каучук. Часто эти вещества называют защитными коллоидами, хотя такое название по существу неправильно и объясняется лишь исторической традицией. [c.95]

    Учащиеся, работающие за одним лабораторным столом, разделяются на две группы. Первая группа займется определением процента белка в молоке, вторая изучит (одержание углеводов и воды. [c.265]

    В СССР важные исследования по жидкофазному автоокислению углеводо родов в гидроперекиси проведены К. И. Ивановым [4—9], П. Г. Сергеевым [10—15], Т. И. Юрженко [16—21], Б. В. Ерофеевым [22, 23] с сотрудниками, и другими учеными [24—26]. Эти исследования позволили создать методы получения высоких концентраций гидроперекисей, качественного и количественного определения их в растворах, выделения в чистом виде и превращения в продукты, представляющие практический интерес. [c.244]

    Перрен и Герцог на основании определения коэффициента диффузии в водных растворах вычисли.ли молекулярные веса некоторых углеводов, допустив, что молекулы их имеют сферическую форму и они настолько малы, что воду можно рассматривать как непрерывную среду и что увеличения радиуса молекул, а следовательно, и коэффициента В вследствие сольватации растворенного вещества не происходит. Полученные ими результаты приведены в табл. III, 1. [c.62]

    Состав многих углеводов выражается формулой (С) (Н20) , в которой формально углерод в определенном соотношении связан с водой. Поэтому этот класс соединений и получил название углеводов. Хотя в настоящее время известны углеводы, не отвечающие приведенной выше формуле, это название прочно укрепилось за данным классом веществ, играющих важную роль в физиологических процессах, протекающих в живых организмах. [c.162]

    Несмотря на широкое использование символов в и ь для обозначения абсолютной конфигурации, этот метод не лишен недостатков. Определение принадлежности того или иного энантиомера к о- или ь-ряду может зависеть от того, к какому соединению его относят. Известны случаи, когда энантиомер можно путем пяти или шести стадий связать с известным соединением о-ряда, а другим путем, также из пяти или шести стадий, этот энантиомер можно связать с ь-энантиомером того же соединения. В таких случаях приходится делать произвольное отнесение к о- или ь-ряду. Из-за отмеченного недостатка, а также из-за некоторых других в настоящее время система оь-обозна-чений используется редко исключение составляют такие соединения, как углеводы и аминокислоты. [c.146]

    Херст, Вуд и другие исследователи Бирмингамской школы провели в 1932—1937 гг. широкие исследования большого количества углеводов [131]. Поскольку при изучении углеводов определения монохроматического оптического вращения играют большую роль (следует в первую очередь указать в этой связи на работы Хадсона), можно надеяться, что продолжение этих исследований с более совершенным современным оборудованием окажется плодотворным (см. также ссылки в табл. 1). [c.282]

    Дж. Хантом и Э. Дегенсом был исследован и.с.у. биологических фракций планктона, отобранного у берегов Перу и Эквадора на глубине 200 м. Для 18 образцов были выделены липиды, пектин, углеводы, сахара, аминокислоты, лигнин и определен их и. с.у. Исследования показали, что и.с.у. одноименных биохимических компонентов образцов планктона не одинаков и связан в некоторых случаях с влиянием температуры. [c.190]

    Важной частью любого исследования чистой культуры является состав среды, в которой происходит рост организмов. Сложная питательная среда типа питательного бульона, часто используемая в бактериологических лабораториях, непригодна для проведения работ с битумами. Такие среды состоят из органических материалов типа пептонов или мясных экстрактов и углеводов в качестве источника углерода и энергии для роста микроорганизмов. В такой среде организмы, которые могут разрушать битум или углеводород, как правило, отдают предпочтение углеводу, а не углеводороду. Поэтому для исследования действия микроорганизмов на битумы нужно получить химически определенную среду, содержащую азот, фосфор, серу и ионы металлов, необходимые для роста, но не содержащую углеводов или каких-либо других легко ассимилирующихся форм углерода. Такой средой является состав, предложенный Филлипсом и Трекслером [20]. Выбор правильного сочетания ингредиентов усложняется тем, что у различных организмов требования к пище неодинаковы. В табл. 5.1 приводится состав среды, использованной для роста организмов класса Pseudomonas на углеводородах. Часто такие среды способствуют также росту организмов других видов. Чтобы установить, будет ли эта среда поддерживать рост организмов определенного вида, следует ввести глюкозу и привить организм. Если будет наблюдаться рост, то среда,, вероятно, может быть пригодна для роста микроорганизмов данного вида при использовании углеводорода или битума в качестве источника углерода вместо глюкозы. [c.179]

    Ароматические углеводо,роды различаются и по числу атомов углерода в боковых цепях, которое колеблется от 3—5 до 25. Однако, как прав/ило, боковые цепи ароматических углеводородов масляных фракций значительно короче, чем боковые цепи соответствующих им по температуре выкипания нафтеновых углеводородов. Одним из важнейших вопросов в исследовании строения молекул ароматических углеводородов является определение числа и структуры баковых цепей. Наиболее точным методом, позволяющим получить представление об этом, является метод спектрального анализа в инфракрасной части спектра. Он дает возможность определить число групп СНз и СН2, т. е., общее число атомов углерода в цепях, по числу СНз-групп — число концов цепей, по соотношению СНз- и СНг-групп — степень их разветвлент ности. [c.15]

    Целлюлоза (клетчатка, вещество клеточных стенок растений ). Истинной клетчаткой или целлюлозой называют совершенно определенный в химическом отношении углевод, который при полном гидролизе целиком распадается на глюкозу. Углевод этот чрезвычайно широко распространен в растительном мире и является основным веществом, из которого строится остов растений. Ботаники часто используют понятие клетчатка несколысо шире, распространяя его и на другие участвующие в построении клеточных стенок полисахариды— маннаны, галактаны и пентозаны, которые наряду с глюкозой содержат также маннозу, галактозу и пентозы. Однако эти комплексные углеводы не используются в качестве чисто строительного материала в определенные периоды жизни растения они могут вновь ассимилироваться и, следовательно, являются резервными питательными веществами. [c.460]

    Недавние рекомендации по названию липидов [6] не дали определения этому термину, и фактически ограничились, как это сделано и здесь, лишь жирами и родственными им производными глицерина. Наиболее обычные липиды — сложные эфиры жирных кислот и глицерина— лучше всего называть аналогично сложным эфирам углеводов [3], а именно называя ациль-ную группу (или группы) в префиксах к родоначальному названию— глицерину. Например, (12) получает название три-стеароилглицерин или тристеарат глицерина (старые названия триглицерид и тристеарин должны быть отброшены). Особый представитель липидов — (25,3/ )-2-аминооктадекандиол-1,2 [c.181]

    Сопоставление котн и распределения величин зарядов указывает на определенную зависимость между ними, а постоянство энтропии исключает возможность изменения механизма при алкилировании разными агентами. Распределение зарядов на углеродных и водородных атомах алкилароматических углеводо- [c.38]

    Как показали Е. Ф. Стефогло и А. Ермакова [20], внутренняя диффузия реагентов не может лимитировать процесса гидрогено-лиза углеводов при размерах частиц порошкообразного катализатора до 0,15 мм. Влияние внешней диффузии можно снять, применяя реакторы с герметическим приводом перемешивающего устройства с числом оборотов 1500—3000 в минуту, обеспечивающим числа Рейнольдса порядка 50 000—150 000 [22, 23]. В кинетической области скорость процесса пропорциональна количеству катализатора, но до определенных пределов с увеличением дозировки катализатора выше этих пределов процесс гидрогеиолиза начнет лимитироваться по водороду [44] неблагоприятные последствия этого рассмотрены в разделе о влиянии концентрации углеводов. Уменьшение дозировки катализатора ниже определенного предела также неблагоприятно, так как скорость процессов гидрирования осколков молекул углеводов будет ниже скорости их образования в растворе вследствие щелочного расщепления это приведет к образованию значительных количеств молочной и других кислот и к дезактивации катализатора.  [c.119]

    Витаминами называют вещества, очень малые дозы которых, наряду с жирами, белками, углеводами и минеральными веществами, необходимы для нормального развития животного организма недостаток витаминов приводит к болезненным явлениям, так называемому авитаминозу. Одкако приведенное определение витаминов требует известного уточнения. Существует много веществ, без которых животный организм не может нормально развиваться среди них встречаются и такие вещества, которые требуются организму в небольших количествах, но которые все же не считаются витаминами, например триптофан или иод. Под витаминами подразу.меаают некоторые сравнительно неустойчивые органические соединения относительно сложного строения, безусловно необходимые животному организму. Животный организм часто неспособен синтезировать их из простых соединений они попадают в животный организм с растительной пищей или образуются в нем в результате превращений довольно сложных соединений растительного происхождения.  [c.890]

    Определение тепловых эффектов химических процессов является задачей термохимии. Термохимические методы имеют большое значение не только в химических, но и в медико-бпологических науках. Энергия, необходимая живым организмам для совершения работы, поддержания постоянной температуры тела и т. д., получается за счет экзотермических реакций окисления, протекающих в клетках. Запас окисляющихся веществ (углеводов, жиров) постоянно возобновляется при приеме пищи. Пищевые рационы, необходимые человеку при различных условиях труда и жизни, определяются с учетом теплотворной с1Юсобности пищевых продуктов. [c.52]

    В этой связи здесь хотелось бы сказать прежде всего о первопроходческих работах в данном направлении Ю. А. Жданова. Являясь активным поборником введения принципа историзма в химию, Ю. А. Жданов еще с 1950-х годов разрабатывает вопросы химической эволюции [21, 22] и, в частности, определения высоты химической организации веществ. В 1960-е годы он предложил применять два параметра для оценки структурного и энергетического уровней органических соединений. Один из них — информационная емкость соединения в расчете на один атом. Этот параметр не зависит от величины и сложности молекулы и служит объективным критерием структурных богатств как одного соединения, так и всего класса (углеводы, аминокислоты, терненоиды, нуклеиновые кислоты, стероиды, алкалоиды). В качестве энергетического параметра Ю. А. Ждановым выбрана средняя степень -окисления атома углерода в молекуле она характеризует электронное окружение атома и отражает соотношение в органическом соединении противоположных тенденций к спонтанному окислительно-восстановительному диспропорционированию. Эта величина выявляет отношение данного соединения к всеобщей среде живого— воде, взаимодействие с которой даже в отсутствие окислителей может привести одни органические соединения к окислению, другие—к восстановлению. [c.192]

    Углеводы играют очень важную роль в природе и в живых организмах. Так, известно, что если по ошибке больному перелить кровь другой группы, наступает бурная, чрезвычайно опасная реакция. Причиной этого является несоответствие полисахаридной цепи бионоли-меров крови донора и реципиента всего лишь на одно — два моносахаридных звена. У антарктических рыб определенные углеводы — глико )ро1еипы играют роль [c.243]

---

3.6. Методы определения углеводов в пищевых продуктах

Моно- и олигосахариды. Для определения
этих углеводов используют их
восстанавливающую способность. Сначала
их извлекают из пищевых продуктов 80%-м
этиловым спиртом. Спиртовые экстракты
упаривают под вакуумом, разбавляют
горячей водой и фильтруют. При анализе
продуктов, относительно богатых белками
и фенольными соединениями, фильтрат
дополнительно обрабатывают нейтральным
раствором ацетата свинца, избыток
которого удаляют сульфатом, фосфатом
или оксалатом натрия. Осадок отфильтровывают,
а в фильтрате определяют восстанавливающие
(редуцирующие) сахара с использованием
гексацианоферрата (III) калия, фелинговой
жидкости или иодометрически. Для
определения сахарозы (вместе с
редуцирующими сахарами) ее необходимо
предварительно гидролизовать.

Качественный и количественный анализ
отдельных сахаров проводят методами
газо-жидкостной, ионообменной или
жидкостной хроматографией высокого
разрешения. Количественные определения
сахаров проводят также методом ионометрии
с использованием ферментных электродов,
обладающих исключительно высокой
селективностью к определенным сахарам.

Усваиваемые полисахариды. Определение
крахмала основано, как правило, на
определении полученной при гидролизе
глюкозы химическими методами или на
способности полученных растворов
вращать плоскость поляризации. Для
определения крахмала необходимо
предварительно освободиться от моно-
и олигосахаридов экстракцией 80%-м
этанолом. Затем проводят извлечение
крахмала из продукта каким-либо способом
(например, растворением сначала в
холодной, потом в горячей воде) и
освобождаются от белков путем обработки
раствора фосфорно-вольфрамовой кислотой,
ацетатом цинка, гексацианоферратом
(III) калия или другими белковыми
осадителями. Определение крахмала
проводят, как правило, путем определения
глюкозы после ферментативного или
кислотного гидролиза. Для расчета
используют соответствующие коэффициенты.
Можно применять метод поляриметрии.

Для определения декстринов их извлекают
теплой (40°С) водой и осаждают 96%-м этанолом,
проводят гидролиз и определяют глюкозу.
Для расчета используют соответствующие
коэффициенты. Можно использовать метод
спектрофотометрии, измеряя интенсивность
окраски иод-крахмального комплекса.

Неусваиваемые углеводы. Общее содержание
пищевых волокон (лигнин + неусваиваемые
углеводы) обычно определяют гравиметрическим
методом. Анализ заключается в использовании
фракционирования – сначала растворяют
крахмал и белки при помощи ферментов,
имитирующих расщепление их в
желудочно-кишечном тракте человека
(α-амилаза, пепсин, панкреатин), растворимые
пищевые волокна осаждают спиртом,
фильтруют, осадок взвешивают.

Пектин. Определение основано на извлечении
пектина (растворимого пектина и
протопектина) из пищевого продукта,
осаждении и взвешивании. Для извлечения
растворимого пектина применяют экстракцию
холодной водой с последующим кипячением.
Для извлечения протопектина применяют
кипячение с соляной кислотой после
извлечения растворимого пектина. Для
продуктов, богатых крахмалом, применяют
специальные приемы его отделения. Для
осаждения пектина проводят реакцию с
хлоридом кальция. Помимо взвешивания
можно определять в осадке содержание
кальция комплексонометрически с трилоном
Б и по этим данным рассчитывать содержание
пектина.

Гемицеллюлозы. Они гидролизуются
труднее, чем пектин, их определяют после
удаления пектинов. Определение
гемицеллюлоз основано на определении
восстанавливающих сахаров, полученных
при кислотном или щелочном гидролизе.
Для расчета используются соответствующие
коэффициенты. Клетчатка. Метод определения
клетчатки основан на проведении гидролиза
легкорастворимых углеводов при
соответствующих условиях и получении
негидролизуемого остатка, который
взвешивают.

Завершая рассмотрение углеводов с точки
зрения пищевой химии, следует сказать,
что все углеводы, независимо от того
простые они или сложные, имеют большое
значение не только как усваиваемые или
неусваиваемые человеком вещества, но
и в отношении их важной роли в пищевых
продуктах и в пищевых технологиях.
Углеводы, особенно крахмал и сахароза,
обеспечивают основную часть калорийности
рациона и вносят значительный вклад в
сенсорную оценку пищевых продуктов.
Углеводы также вносят большой вклад в
текстуру продуктов, поскольку они
способны влиять на вязкость, кристаллизацию,
гелеобразование, стабильность. Они
влияют на приятные ощущения во рту
благодаря сладости, на цвет и аромат
пищевых продуктов благодаря их способности
претерпевать химические превращения
с образованием окрашенных и ароматических
веществ. При производстве многих пищевых
продуктов углеводы составляют один из
главных сырьевых ресурсов для физических,
химических, биохимических и
микробиологических процессов, управление
которыми позволяет получать широкую
гамму продуктов питания разного
назначения с различными свойствами.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОРГАНИЧЕСКИХ КИСЛОТ, УГЛЕВОДОВ И ПОДСЛАСТИТЕЛЕЙ В ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТАХ И БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ДОБАВКАХ МЕТОДОМ ВЫСОКОЭФФЕКТИВНОЙ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ | Zaharova

Determination of Carbohydrates by HPLC-ECD with a Novel Stationary Phase Prepared from Polystyrene-Based Resin and Tertiary Amines / T. Masuda et [al.] // J. Analytical Sciences. 2001. V.17. P. 895-898.

Improving HPLC Performance with Alltech’s Evaporative Light Scattering Detector (ELSD) / Application Booklet № 1. Pharmaceutical Analyses. Bulletin № 424A. 2000. 7 p.

Highly efficient analysis of underivatized carbohydrates using monolithic-silica-based capillary hydrophilic interaction (HILIC) HPLC / T. Ikegami et [al.] // Anal. Bioanal. Chem. 2008. V.15. P 125-135.

Corradini C., Cavazza A., Bignardi C. High-Performance Anion-Exchange Chromatography Coupled with Pulsed Electrochemical Detection as a Powerful Tool to Evaluate Carbohydrates of Food Interest: Principles and Applications // International J. of Carbohydrate Chemistry. 2012. V. 2012. P. 487-500.

Davis M. W. A rapid modified method for compositional carbohydrate analysis of lignocellulosics by high pН anion-exchange chromatography with pulsed amperometric detection (HPAEC/PAD) // J. of wood chemistry and technology. 1998. V. 18, № 2. P. 235-252.

Optimization of carbohydrate silylation for gas chromatography / R. Rojas-Escudero et [al.] // J. of Chromatography A. 2004. V. 1027. P. 117-120.

Определение моносахаридов методом реакционной газовой хроматографии/масс-спектрометрии с удалением реагента из реакционной смеси/ И.А. Ревельский и [др.] // Масс-спектрометрия. 2009. Т. 6, № 3. С. 221-225.

ГОСТ Р 51621-2000 Алкогольная продукция и сырье для ее производства. Методы определения массовой концентрации титруемых кислот. М., 2000. 6 с.

ГОСТ Р 51654-2000 Алкогольная продукция и сырье для ее производства. Метод определения массовой концентрации летучих кислот. М., 2000. 8 с.

Determination of organic acids in the presence of inorganic anions by ion chromatography with suppressed conductivity detection / X. Geng et [al.] // J. of Chromatography A. 2008. V.1192. P. 187-190.

Golden K.D., Williams O.J. Amino Acid, Fatty Acid, and Carbohydrate Content of Artocarpus altilis (Breadfruit) // J. of Chromatographic Science. 2001. V. 39. Р. 243-250.

You1 J., Zhang W., Zhang Y. Simple derivatization method for sensitive determination of fatty acids with fluorescence detection by high-performance liquid chromatography using 9-(2-hydroxyethyl)-carbazole as derivatization reagent // Analytica Chimica Acta. 2001. V. 436. P. 163-172.

Determination of Organic Acids, Sugars, Diacetyl, and Acetoin in Cheese by High-Performance Liquid Chromatography / J. Ding et [al.] // J. Agric. Food Chem. 2001. V. 49. P. 272-276.

Ergonul P.G., Nergiz C. Determination of organic acids in olive fruit by HPLC // Czech J. Food Sci. 2010. V. 28. P. 202-205.

Kordi-Krape M. Determination of Organic Acids in White Wines by RP-HPLC // Food technol. biotechnol. 2001. V. 39, № 2. P. 93-99.

Zeppa G., Conterno L., Gerbi V. Rapid determination of main constituents of packed juices by reverse phase-high performance liquid chromatography: an insight in to commercial fruit drinks // J. Agric. Food Chem. 2001. V. 49. P. 272-276.

HPLC Organic Acid Analysis in Different Citrus Juices under Reversed Phase Conditions / V. Nour et [al.] // Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj. 2010. V. 38, № 1. P. 44-48.

Руководство по методам контроля качества и безопасности биологически активных добавок к пище Р 4.1.1672-2003. М.: Минздрав России, 2004. 183 с.

Nour V., Trandafir I., Ionica M.E. HPLC Organic Acid Analysis in Different Citrus Juices under Reversed Phase Conditions // Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj. 2010. V. 38, № 1. P. 44-48.

An improved HPLC method for the analysis of organic acids, carbohydrates, and alcohols in grape musts and wines / M. Castellari et [al.] // J. of Liquid Chromatography & Related Technologies. 2000. V. 23, № 13. P. 2047-2056.

Количественное определение углеводов

Количественное определение углеводов, разделенных в тонком слое силикагеля [81], излагается ниже.[ …]

Для количественного определения углеводов, разделенных хроматографией на бумаге, используют различные методы. Количество моносахарида можно определить непосредственно на хроматограммах измерением денситометром [53] интенсивности окраски пятен, полученных при проявлении, например, анилинфталатом [54] или азотнокислым серебром [55]. Ошибка прямого измерения интенсивности окраски пятен достигает 10—15%, поскольку окраска часто бывает нестабильной и в сильной степени зависит от условий обработки хроматограмм перед измерением. Однако из-за быстроты определения этот метод находит применение.[ …]

Для количественного определения моносахаридов колориметрическим методом [60] каждую порцию элюата содержащую 10—70 мкг моносахарида), предварительно профильтрованную через стеклянную вату, смешивают с 1 мл 5%-ного водного раствора фенола и быстро добавляют на поверхность смеси концентрированную серную кислоту (5 мл, 95,5%, уд. вес 1,84) из пипетки с широким отверстием. Через 10 мин пробирки встряхивают и помещают в водяную банф при температуре 25—30° С на 15 мин. Интенсивность оранжево-желтой окраски определяют на спектрофотометре. Количество моносахарида находят по стандартной кривой степени поглощения света аналогично приготовленными растворами чистых углеводов. Точность метода ±5%.[ …]

Смесь углеводов разделяют в слое силикагеля, который перед наиесением на пластинку (200X200 мм) смешивают с 0,1 н. раствором борной кислоты. Для хроматографирования применяют систему растворителей бензол—ледяная уксусная кислота—метанол (2:2:6). Углеводы в слое адсорбента проявляют раствором 1,3-диоксинафтолрезорцина в серной кислоте. Для количественного определения углеводов пятна вместе с адсорбентом снимают с пластинки в пробирки, смешивают с 0,05 н. раствором КгСггО? в 10%-ной Н2804, нагревают в течение 60 мин при 90°С, охлаждают, прибавляют 20 мл воды и 5 мл 5%-ного раствора йодистого калия. Выделившийся йод титруют 0,01 и. раствором тиосульфата натрия. Точность метода ±5%.[ …]

Образование и количественный состав различных веществ в растениях зависят от удобрения лишь в определенной степени. Значительно сильнее и более устойчиво проявляется действие климатических факторов и прежде всего генетически обусловленных свойств. Так, путем селекции получены люпин с низким содержанием алкалоидов, сахарная свекла с высоким содержанием сахара, картофель с высоким содержанием крахмала и рапс с низким содержанием эруковой кислоты. Менгель [162] указывает, что ¡питание тоже влияет на синтез в растениях веществ, определяющих их качество (белки, углеводы, жиры, витамины и др.), поэтому удобрения должны использоваться в соответствии с требованиями качества.[ …]

Простейшим методом определения достаточности питания является наблюдение за динамикой массы тела человека. Установить соответствие питания потребностям организма по всем компонентам можно на основании лабораторного анализа рациона, когда определяется содержание в нем белков, жиров, углеводов, минеральных солей, витаминов. Другим методом оценки питания является определение качественного состава и энергетической ценности рациона с использованием таблиц химического состава продуктов. Для подсчета количественного состава рациона необходимо иметь перечень и количество продуктов, входящих в суточный рацион (меню-раскладка). Этот метод несколько уступает по точности первому, но является наиболее доступным.[ …]

Более точные результаты количественного определения углеводов в виде окрашенных веществ в слое адсорбента достигаются по спектрам отражения [80].[ …]

Более достоверные данные количественного определения углеводов получают элюированием из хроматограмм окрашенных пятен растворителями с последующим колориметрированием окрашенного раствора. Ошибка колориметрических определений в отдельных случаях достигает 10%.[ …]

Недавно предложена более совершенная методика определения лигнина с фтористоводородной кислотой [11]. Авторы этой методики подчеркивают ряд преимуществ фтористоводородной кислоты по сравнению с серной при использовании ее для количественного определения лигнина. Фтористоводородная кислота обладает очень высокой проникающей способностью, вызывает сильное набухание древесины, хорошо растворяет и гидролизует углеводы, не вызывая при этом гумификации. Для количественного определения лигнина вместо жидкого НИ предложили использовать менее концентрированную фтористоводородную кислоту. Вся аппаратура для определения (рис. 38) должна быть изготовлена из фторопласта. Фильтр также изготовляется из фторопласта и снабжается дном из пористого монеля.[ …]

Важнейшими методами выделения лигнина, применяющимися для количественного определения, являются методы с использованием крепких кислот: 64—72%-ной серной кислоты и 41 — 42%-ной соляной кислоты. При обработке измельченной древесины (после экстракции смолистых веществ) концентрированными кислотами углеводы гидролизуются и удаляются, а лигнин получается в виде негидролизуемого остатка более или менее темного цвета.[ …]

В целом приведенные в данной главе материалы показывают, что углеводы и азотсодержащие вещества являются важными трофическими факторами, оказывающими определенное количественное влияние на цветение растений. Опыты с короткодпевны-ми и длиииодневиыми видами показали, что углеводный и азотный обмены растений являются частью метаболического фона, который оказывает активное влияние па синтез более специфических гормональных регуляторов цветения растений. [ …]

Для характеристики гемицеллюлоз необходимо знать качественный и количественный состав молекул полисахаридов, входящих в их состав. Исследование этих полимерных углеводов включает: установление числа, соотношения и последовательности распределения компонентов в полимерной цепи, природы, числа и местоположения остатков, составляющих ответвления цепи, состава и положения неуглеводных заместителей, степени разветвленности молекул, положения и конфигурации гликозидных связей; определение спектров поглощения, молекулярного веса, оптической активности, плотности и других химических, физико-химических и физических свойств.[ …]

К первой группе относятся методы, основанные на гидролизе углеводной части концентрированными минеральными кислотами — 72%-ной h3S04 и 41—42%-ной (сверхконцентри-рованной) НС1. Углеводы гидролизуются и растворяются, а лигнин получается в виде нерастворимого остатка темного цвета. Таким методом получают сернокислотный и солянокислотный лигнины. Этот метод применяется для количественного определения содержания лигнина в древесине. Однако кислотные лигнины очень изменены по сравнению с природными и поэтому не применимы для изучения строения лигнина.[ …]

С аналитической точки зрения под лигнином понимают ту часть растительного материала, которая удаляется при выделении холоцеллюлозы и которая остается в нерастворимом остатке после гидролиза углеводов крепкими кислотами. Это понятие в некоторой степени условно. Возможно, что при выделении лигнина из древесины от природного лигнина (протолигнина) отщепляются какие-то группы, поэтому выделенный лигнин по своему составу и свойствам будет значительно отличаться от исходного природного лигнина. Однако, несмотря на условность, кислотные методы количественного определения лигнина до сих пор считаются наиболее приемлемыми. Результаты, полученные при прямом определении лигнина путем гидролиза углеводов крепкими кислотами, совпадают с потерей в весе при выделении холоцеллюлозы. Поэтому ту часть растительной ткани, которая в последнем случае переходит в раствор, можно практически считать идентичной с лигнином, выделенным при прямом определении. [ …]

Разделенные на хроматограммах моносахариды могут быть определены по интенсивности окраски с трифенилтетразолом [62]. Бесцветный трифенилтетразол в щелочном растворе восстанавливает редуцирующие углеводы с образованием трифенилформазоана темно-красного цвета. Определение моносахаридов по этому методу проводят следующим образом. Разделенные на хроматограмме моносахариды проявляют опрыскиванием свежеприготовленным 2%-ным раствором хлористого трифенилтетразола в 1 н. растворе гидроокиси натрия. Хроматограммы выдерживают 20 мин при 40° С в камере, насыщенной водяными парами. После этого отмывают с хроматограмм избыток хлористого трифенилтетразола и сушат их при 25° С. Редуцирующие моносахариды образуют на бумаге ярко-красные пятна. Куски бумаги с пятнами вырезают, окрашенные вещества экстрагируют раствором пиридина в 10%-ной соляной кислоте и определяют оптическую плотность раствора в колориметре. Для количественного определения должна быть построена калибровочная кривая оптической плотности растворов каждого моносахарида для нескольких концентраций. Этим методом можно определять до 5 мкг моносахарида..[ …]

При получении летучих производных моносахаридов, необходимых для газовой хроматографии, для каждого компонента теоретически возможно образование пяти форм: а-, р-пиранозы, а-, Р-фуранозы и. линейная форма. Однако в значительных количествах образуются лишь четыре из них. Смеси, состоящие из пяти компонентов, при газовой хроматографии дают большое количество пиков, которые часто перекрываются. Для количественной оценки углеводов на хроматограммах с перекрывающимися пиками необходимо довести состояние различных форм до равновесия, чтобы быть уверенным, что определенные формы моносахарида всегда содержатся в одинаковых соотношениях и для любого моносахарида отношение между разными площадями пиков остается постоянным. Это позволяет вычислять общее количество отдельного моносахарида лишь по одному пику.[ …]

Содержание углеводов в кале (редуцирующие вещества в кале; Stool sugars; Reducing substances, fecal)

Исследуемый материал
Кал

Метод определения
Метод Бенедикта.

Тест используется, главным образом, для диагностики лактазной недостаточности (нарушения всасывания лактозы и плохой переносимости продуктов питания, содержащих молочный сахар) у детей первого года жизни.

Молочный сахар, или лактоза — основной углевод молока. Это дисахарид, состоящий из глюкозы и галактозы. В тонкой кишке он расщепляется на эти моносахариды, но только с помощью единственного фермента — лактазы. Нерасщеплённая лактоза остаётся в просвете кишечника, удерживает жидкость, способствует поносу, появлению большого количества газа, спастических болей в животе.

Лактазная недостаточность (ЛН) – врождённое или приобретённое состояние, характеризующееся снижением активности фермента лактазы. Непереносимость лактозы – это клинически проявляющаяся врождённая или приобретённая неспособность его расщеплять. Эквивалентом термина «непереносимость лактозы» является «интолерантность к лактозе». Такая ферментная недостаточность является широко распространённым состоянием. У взрослых она различается в зависимости от региона: Швеция, Дания – 3%, Финляндия, Швейцария – 16%, Англия – 20 — 30%, Франция – 42%, страны Юго-Восточной Азии, афро-американцы США – 80 — 100%, Европейская часть России – 16 — 18%.

Наибольшую значимость эта проблема имеет для детей раннего возраста, так как в этот возрастной период молочные продукты составляют значительную долю в диете, а на первом году жизни являются основным продуктом питания. Лактоза составляет примерно 80 — 85% углеводов грудного молока и содержится в нём в количестве 6 — 7 г/100 мл. В коровьем молоке её содержание несколько ниже — 4,5 — 5,0 г/100 мл. Другие молочные продукты также содержат лактозу, но в ещё меньших количествах. Лактаза впервые обнаруживается на 10 — 12 неделе гестации; с 24 недели начинается рост её активности, который достигает максимума к моменту рождения. С 17 по 24 недели она наиболее активна в тощей кишке, затем активности в проксимальном и дистальном отделах кишечника выравниваются. C 28 по 34 неделю активность лактазы составляет 30% от её уровня на 39 — 40 недели. В последние недели гестации происходит быстрое нарастание активности лактазы до уровней, превышающих уровень взрослого.

Перечисленные факторы обуславливают лактазную недостаточность у недоношенных и незрелых к моменту рождения детей. У доношенных новорождённых активность фермента в 2 — 4 раза выше, чем у детей в возрасте 10 — 12 месяцев. В последующие годы жизни активность лактазы в норме снижается, составляя у взрослых лишь 5 — 10% от исходного уровня.

По степени выраженности различают частичную (гиполактазия) или полную (алактазия) лактазную недостаточность. По происхождению: первичную ЛН (врождённое снижение активности лактазы при морфологически сохранном энтероците) и вторичную ЛН (снижение активности лактозы, связанное с повреждением энтероцита).

Варианты первичной ЛН:

• врождённая (генетически обусловленная, семейная) ЛН; 
• транзиторная ЛН недоношенных и незрелых к моменту рождения детей; 
• ЛН взрослого типа (конституциональная ЛН).

Вторичная лактазная недостаточность особенно распространена среди детей первого года жизни и часто является следствием дисбактериоза кишечника или незрелости поджелудочной железы. Причинами её могут быть: инфекции (ротавирус, условно-патогенная микрофлора), пищевая аллергия, целиакия, лямблиоз, энтериты.

В раннем детском возрасте лактазная недостаточность носит чаще транзиторный или вторичный характер. Она нередко является причиной колик, беспокойства, диспепсических расстройств. Поскольку симптоматика вторичной лактазной недостаточности наслаивается на симптомы основного заболевания, диагностика её может быть весьма затруднительной. Вторичная лактазная недостаточность проходит после коррекции кишечного дисбиоза или с возрастом (транзиторная), и тогда в старшем возрасте молочный сахар нормально усваивается.

Подтвердить или опровергнуть лактазную недостаточность можно, определяя содержание углеводов в кале методом Бенедикта. Это исследование отражает общую способность усваивать углеводы. В основе данного исследования лежит реакция, позволяющая выявлять присутствие сахаров, обладающих редуцирующей активностью (способностью восстанавливать медь из состояния Cu2+ в Cu1+). К ним относятся глюкоза, галактоза, лактоза, фруктоза, мальтоза. Сахароза такой способностью не обладает.

В норме, содержание сахаров, обладающих редуцирующей активностью, в кале незначительно. Превышение референсных значений характеризует нарушения расщепления и всасывания сахаров. При обследовании детей первого года жизни результат отражает, преимущественно, остаточное содержание в кале молочного сахара – лактозы и продуктов расщепления остаточной лактозы (глюкоза и галактоза) микрофлорой толстого кишечника и фекалий.

Метод не позволяет дифференцировать различные виды дисахаридазной недостаточности между собой, однако совместно с клиническими данными вполне достаточен для скрининга и контроля правильности подбора диеты.

 

Литература

1. Секачева М. И. Синдром мальабсорбции углеводов в клинической практике. Клинические аспекты гастроэнтерологии., гепатологии. 2002,  №1, — с. 29 — 34.
   




2. Корниенко Е. А., Митрофанова Н. И., Ларченкова Л. В. Лактазная недостаточность у детей раннего возраста. Вопросы современной педиатрии. 2006, №5, — с. 82 — 86.
   




3. Wallach J. Interpretation of Diagnostic Tests. ed. 7 — Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2000, 543 p.




4. Heyman M. Lactose intolerance in Infant, Children, and Adolescents. Pediatrics. 2006,118, 3, pp. 1279-1286.

Количественное определение суммы углеводов в пересчете на фруктозу в соке лопуха после конверсии в фураны | Копытько

C. J. Moye, Australian J. Chem., 19(12), 2317 – 2320 (1964).

P. E. Shaw, J. H. Tatum, R. E. Berry, Carbohydr. Res., 5(3), 266 – 273 (1967).

M. J. Antal, W. S. L. Mok, G. N. Richards, Carbohydr. Res., 199, 91 – 109 (1990).

H. E. Van Dam, A. P. G. Kieboom, H. Van Bekkum, Starch/Stдrke, 38, 95 – 101 (1986).

B. F. M. Kuster, Starch – Stдrke, 42(8), 314 – 321 (1990).

J. Horvat, B. Klaić, B. Metelko, et al., Tetrahedron Let., 26, 2111 – 2114 (1985).

S. McKibbins, J. F. Harris, J. F. Saeman, et al., Forest Prod. J., 12, 17 – 23 (1962).

B. Girisuta, L. P. B. M. Janssen, H. L. Heeres, Chem. Eng. Res., 84, 339 – 349 (2006).

B. Girisuta, L. P. Janssen, B. M. Janssen, et al., Green Chem., 8, 709 (2006).

X. Fan, J. Agric. Food Chem., 53(20), 7826 – 7831 (2005).

M. J. Antal and W. S. L. Mok, Carbohydr. Res., 199(1), 91 – 109 (1990).

M. Herrera, M. Castro-Puyana, L. Rocamora, et al., Food Res. Intern., 47(1), 31 – 37 (2012).

E. R. Garrett, J. Blanch, Anal. Chem., 39(10), 1109 – 1113 (1967).

J. Serra-Bonvehi, Sciences-des-Aliments, 11, 547 – 557 (1995).

P. B. Andrade, M. T. Amaral, A. P. Cunha, et al., Acta-Technologiae-et-Legis-Medicamenti, 6, 289 – 293 (1995).

B. O. T. Roig, Anal. Chim. Acta, 477, 325 – 329 (2003).

J. M. De Bruijn, A. P. G. Kieboom, H. van Bekkum, Recl. Trav. Chim. Pays-Bas, 106, 35 – 43 (1987).

Y. Y. Byung, R. Montgomery, Carbohydr. Res., 280(1), 47 – 57 (1996).

Y. Y. Byung, R. Montgomery, Carbohydr. Res., 280(1, 4), 27 – 45 (1996).

Y. Y. Byun, R. Montgomery, Bioresource Technol., 98(16), 3084 – 3089 (2007).

J. N. BeMiller, T. R. Steinheimer, E. E. Jr. Allen, Clin. Chem., 13(4), 261 – 269 (1967).

G. R. Ponder and G. N. Richards, Carbohydr. Res., 244(2), 341 – 359 (1993).

Анализ углеводов

| SpringerLink

• James N. BeMiller

Chapter

First Online: 07 июня 2017

• 4
  Цитаты

• 161 тыс.
  Загрузки

Часть
Серия текстов о пищевой науке
серия книг (FSTS)

Abstract

В этой главе рассматриваются принципы, процедуры и приложения анализа углеводов, обычно используемые для маркировки пищевых продуктов, обеспечения качества или исследования пищевых ингредиентов и / или продуктов.Хотя хроматографические методы в значительной степени заменили многие старые методы, некоторые старые методы по-прежнему широко используются для исследований и обеспечения качества [например, колориметрические методы для определения общего количества углеводов (метод фенол-серной кислоты), различные методы восстанавливающего сахара (например, метод Сомоджи-Нельсона). ) и физические измерения (на основе удельного веса или показателя преломления)]. Хроматографические методы (высокоэффективная жидкостная хроматография и газовая хроматография) разделяют смеси на составляющие сахара, идентифицируют каждый компонент по времени удерживания и обеспечивают измерение количества каждого компонента.Ферментативные методы специфичны и чувствительны, но редко, за исключением крахмала, требуется определение только одного компонента. В отсутствие универсальной процедуры анализа большинства полисахаридов их анализ обычно включает выделение с последующей идентификацией на основе гидролиза до составляющих моносахаридов и их определения. Исключением является крахмал, который можно измерить путем расщепления до глюкозы с использованием определенных ферментов (амилаз) с последующим измерением высвобожденной глюкозы.Нерастворимые пищевые волокна, растворимые пищевые волокна и общие пищевые волокна состоят в основном из некрахмальных полисахаридов. Методы определения общего количества пищевых волокон и их компонентов основаны на удалении перевариваемого крахмала с помощью амилаз и удалении перевариваемого белка с помощью протеазы, оставляя неперевариваемый остаток.

Ключевые слова

Анализ углеводов Анализ сахара Анализ полисахаридов Анализ крахмала Анализ волокна

Это предварительный просмотр содержимого подписки,

войдите в систему

, чтобы проверить доступ.

Ссылки

1. 1.

   BeMiller JN (2007) Углеводородная химия для ученых в области пищевых продуктов, 2

   ^nd

   edn. AACC International, Сент-Пол, Миннесота

   Google Scholar

2. 2.

   Бемиллер Дж. Н., Хубер К. (2017) Углеводы (глава 4). В: Damodaran S, Parkin KL, Fennema OR (ред.), Food Chemistry, 5-е изд. Марсель Деккер, Нью-Йорк

   Google Scholar

3. 3.

   Консультации экспертов ФАО / ВОЗ по углеводам в питании человека.14–18 апреля 1997 г., Рим

   Google Scholar

4. 4.

   Официальные методы анализа AOAC International (Online). AOAC International, Gaithersburg, MD

   Google Scholar

5. 5.

   Peris-Tortajada M (2004) Углеводы и крахмал (Глава 13). В: Nollet LML (ed) Handbook of Food Analysis, 2

   ^nd

   edn. Марсель Деккер, Нью-Йорк

   Google Scholar

6. 6.

   Anon. (2016) Свод федеральных правил, раздел 21, часть 101.9 — Маркировка пищевых продуктов питания. Типография правительства США, Вашингтон, округ Колумбия

   Google Scholar

7. 7.

   USDA (2016) База данных по питательным веществам USDA для стандартной справки. Выпуск 28, 2016.

   http://ndb.nal.usda.gov

8. 8.

   Dubois M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PA, Smith F (1956) Колориметрический метод определения сахаров и родственных веществ . Аналитическая химия 28: 350

   CrossRefGoogle Scholar

9. 9.

   Wood TM (1994) Ферментативное превращение целлюлозы в d-глюкозу.Методы химии углеводов 10: 219.

   Google Scholar

10. 10.

    Miller G, Blum R, Glennon WEG, Burton A. (1960) Измерение активности карбоксиметилцеллюлазы. Аналитическая биохимия 1: 127

    CrossRefGoogle Scholar

11. 11.

    El Rassi Z (ed) (1995) Углеводный анализ. Journal of Chromatography Library vol 58

    Google Scholar

12. 12.

    Андерсен Р., Соренсен А. (2000) Разделение и определение альдитов и сахаров с помощью анионообменной хроматографии с высоким pH с импульсным амперометрическим детектированием.Journal of Chromatography A 897: 195

    CrossRefGoogle Scholar

13. 13.

    Hanko VP, Rohrer JS (2000) Определение углеводов, сахарных спиртов и гликолей в культурах клеток и ферментационных бульонах с использованием высокоэффективной анионообменной хроматографии с импульсной амперометрическое обнаружение. Аналитическая биохимия 283: 192

    CrossRefGoogle Scholar

14. 14.

    Cataldi TRI, Campa C, DeBenedetto GE (2000) Анализ углеводов с помощью высокоэффективной анионообменной хроматографии с импульсным амперометрическим детектированием: потенциал все еще растет.Журнал аналитической химии Фрезениуса 368: 7391

    CrossRefGoogle Scholar

15. 15.

    Zhang Y, Lee YC (2002) Высокоэффективная анионообменная хроматография углеводов на колонках с пленочной смолой. Journal of Chromatography Library 66: 207

    CrossRefGoogle Scholar

16. 16.

    Soga T (2002) Анализ углеводов в продуктах питания и напитках с помощью ВЭЖХ и КЭ. Журнал библиотеки хроматографии 66: 483

    CrossRefGoogle Scholar

17. 17.

    Montero CM, Dodero MCR, Sánchez DAG, Barroso CG (2004) Анализ низкомолекулярных углеводов в пищевых продуктах и ​​напитках: обзор. Хроматография 59:15

    Google Scholar

18. 18.

    Corradini C, Cavazza A, Bignardi C (2012) Высокоэффективная анионообменная хроматография в сочетании с импульсным электрохимическим обнаружением как мощный инструмент для оценки углеводов, представляющих пищевой интерес: принципы и Приложения. Международный журнал химии углеводов 487564

    Google Scholar

19. 19.

    Peris-Tortajada M (2012) Определение углеводов в пищевых продуктах с помощью ВЭЖХ (Глава 7) В: Nollet LM, Toldra F (eds) Food analysis by HPLC, 3

    ^rd

    edn. CRC Press, Boca Raton

    Google Scholar

20. 20.

    Yan X (2014) Высокоэффективная жидкостная хроматография для анализа углеводов (Глава 3) In: Zuo Y (ed) Высокоэффективная жидкостная хроматография (HPLC). Nova Science Publishers, Hauppauge, NY

    Google Scholar

21. 21.

    Ammeraal RN, Delgado GA, Tenbarge FL, Friedman RB (1991) Высокоэффективная анионообменная хроматография с импульсным амперометрическим детектированием линейных и разветвленных олигосахаридов глюкозы.Carbohydrate Research 215: 179

    CrossRefGoogle Scholar

22. 22.

    Marioli JM (2001) Электрохимическое определение углеводов в ВЭЖХ. Текущие темы в электрохимии 8:43

    Google Scholar

23. 23.

    LaCourse WR. (2002) Импульсное электрохимическое обнаружение углеводов на электродах из благородных металлов после жидкостной хроматографии и электрофоретического разделения. Библиотека журнала хроматографии 66: 905

    CrossRefGoogle Scholar

24. 24.

    Baldwin RP (2002) Электрохимическое определение углеводов при постоянном потенциале после разделения методом ВЭЖХ и КЭ. Journal of Chromatography Library 66: 947

    CrossRefGoogle Scholar

25. 25.

    LaCourse WR (2009) Достижения в области импульсного электрохимического обнаружения углеводов. Достижения в хроматографии 47: 247

    Google Scholar

26. 26.

    Kazmaier T, Roth S, Zapp J, Harding M, Kuhn R (1998) Количественный анализ мальтоолигосахаридов с помощью масс-спектрометрии MALDI-TOF, капиллярного электрофореза и аниона обменная хроматография.Журнал аналитической химии Фрезениуса 361: 473

    CrossRefGoogle Scholar

27. 27.

    Дворжакова Э., Шнублова М., Грдличка П. (2014) Углеводный анализ: от подготовки образца до ВЭЖХ на различных стационарных фазах в сочетании с обнаружением светорассеяния испарением. Journal of Separation Science 37: 323

    CrossRefGoogle Scholar

28. 28.

    Churms SC (1995) Высокоэффективная хроматография гидрофильных взаимодействий углеводов с полярными сорбентами (Глава 3).В: ссылка 11

    Google Scholar

29. 29.

    Ball GFM (1990) Применение ВЭЖХ для определения низкомолекулярного сахара и многоатомных спиртов в пищевых продуктах: обзор. Food Chem 35: 117

    CrossRefGoogle Scholar

30. 30.

    Hernandez-Hernandez O, Moreno FJ, Sanz ML (2012) Анализ диетических сахаров в напитках с помощью газовой хроматографии. Пища и пищевые компоненты в фокусе 3: 208

    CrossRefGoogle Scholar

31. 31.

    Руис-Матуте А.И., Эрнандес-Эрнандес О., Родригес-Санчес С., Санс М.Л., Мартинес-Кастро И. (2011) Дериватизация углеводов для анализов ГХ и ГХ-МС. Журнал хроматографии B: Аналитические технологии в биомедицине и науках о жизни 879: 1226

    CrossRefGoogle Scholar

32. 32.

    Fox A, Morgan SL, Gilbart J (1989) Получение ацетатов альдита и их анализ с помощью газовой хроматографии (ГХ) и масс-спектрометрия (МС) (Глава 5). В: Biermann CJ, McGinnis GD (ed) Анализ углеводов с помощью ГЖХ и МС.CRC Press, Boca Raton

    Google Scholar

33. 33.

    Fox A (2002) Текущий взгляд на анализ мономеров сахара с использованием ГХ-МС и ГХ-МС / МС. Journal of Chromatography Library 66: 829

    CrossRefGoogle Scholar

34. 34.

    van Leeuwen KA, Prenzler PD, Ryan D, Camin F (2014) Масс-спектрометрия газовой хроматографии и сжигания изотопов для прослеживаемости и подлинности пищевых продуктов и напитков. Комплексные обзоры в области пищевой науки и безопасности пищевых продуктов 13: 814

    CrossRefGoogle Scholar

35. 35.

    Бемиллер Дж. Н. (ред.) (1994) Методы химии углеводов, том 10, Ферментные методы. John Wiley, New York

    Google Scholar

36. 36.

    Bergmeyer HU (ed) (1984) Методы ферментативного анализа, том 6, Метаболиты 1: Углеводы, 3-е изд. Verlag Chemie, Weinheim, Германия

    Google Scholar

37. 37.

    Cabálková, J., ídková, J., Přibyla, L., and Chmelík, J. (2004) Определение углеводов в соках капиллярным электрофорезом, высокопроизводительная жидкостная хроматография и матричная лазерная десорбция / ионизация-время пролетной масс-спектрометрии.

    Электрофорез

    25: 487

    CrossRefGoogle Scholar

38. 38.

    Thibault P, Honda S (eds) (2003) Капиллярный электрофорез углеводов, Методы молекулярной биологии, том 213

    Google Scholar

.

Cortacero-Ramírez S, Segura-Carretero A, Cruces-Blanco C, Hernáinz-Bermúdez de Castro M, Fernandez-Gutiérrez A (2004) Анализ углеводов в напитках с помощью капиллярного электрофореза с предколоночной дериватизацией и УФ-детектированием.Food Chemistry 87: 471

CrossRefGoogle Scholar

39. 40.

    Ramírez SC, Carretero S, Blanco CC, de Castro MHB, Gutiérrez AF (2005) Непрямое определение углеводов в образцах сусла и диетических продуктах с помощью капиллярного электрофореза. Journal of the Science of Food and Agriculture 85: 517

    CrossRefGoogle Scholar

40. 41.

    Ma S, Lau W, Keck RG, Briggs JB, Jones AJS, Moorhouse K, Nashabeh W (2005) Капиллярный электрофорез углеводов, дериватизированных с фторофорные соединения.Методы в молекулярной биологии 308: 397

    PubMedGoogle Scholar

41. 42.

    Momenbeik F, Johns C, Breadmore MC, Hilder EF, Macka M, Haddad PR (2006) Чувствительное определение углеводов, меченных п-нитроанилином, с помощью капиллярного электрофореза фотометрическое детектирование с использованием светодиода с длиной волны 406 нм. Электрофорез 27: 4039

    CrossRefGoogle Scholar

42. 43.

    Volpi N (ed) (2011) Капиллярный электрофорез углеводов. От моносахаридов до сложных полисахаридов.Humana Press, Нью-Йорк.

    Google Scholar

43. 44.

    Asp N-G, Björck I (1992) Устойчивый крахмал. Тенденции в пищевой науке и технологиях 3: 111

    CrossRefGoogle Scholar

44. 45.

    Перера А., Меда В., Тайлер Р.Т. (2010) Устойчивый крахмал: обзор аналитических протоколов для определения резистентного крахмала и факторов, влияющих на содержание резистентного крахмала еды. Food Research International 43: 1959

    CrossRefGoogle Scholar

45. 46.

    BeMiller JN (2016) Камеди / гидроколлоиды: аналитические аспекты (Глава 6). В: Eliasson A-C (ed) Carbohydrates in Food, 3

    ^rd

    edn. CRC Press, Boca Raton

    Google Scholar

46. 47.

    Baird JK (1993) Анализ жевательных резинок в пищевых продуктах (Глава 23). В: Whistler RL, BeMiller JN (eds) Industrial Gums, 3

    ^rd

    edn. Academic, San Diego

    Google Scholar

47. 48.

    Харрис П., Моррисон А., Дакомб С. (1995) Практический подход к анализу полисахаридов (глава 18).В: Стивен AM (ред.) Пищевые полисахариды и их применение. Марсель Деккер, Нью-Йорк

    Google Scholar

48. 49.

    Biermann CJ (1989) Гидролиз и другое расщепление гликозидных связей (Глава 3). В: Biermann CJ, McGinnis GD (ed) Анализ углеводов с помощью ГЖХ и МС. CRC Press, Boca Raton

    Google Scholar

49. 50.

    Fillisetti-Cozzi TMCC, Carpita NC (1991) Измерение уроновой кислоты без влияния нейтральных сахаров. Аналитическая биохимия 197: 157

    CrossRefGoogle Scholar

50. 51.

    Ибарз А., Паган А., Трибальдо Ф, Паган Дж. (2006) Улучшение измерения спектрофотометрических данных в методах определения м-гидроксидифенилпектина. Food Control 17: 890

    CrossRefGoogle Scholar

51. 52.

    Yapo BM (2012) Колориметрический сернокислотный анализ уроновых кислот в пищевых материалах: потенциальные источники расхождений в данных и способы их устранения. Методы анализа пищевых продуктов 5: 195

    CrossRefGoogle Scholar

52. 53.

    Бейкер Р.А. (1997) Повторная оценка уровней пектинов в некоторых фруктах и ​​овощах. Journal of Food Science 62: 225

    CrossRefGoogle Scholar

53. 54.

    Walter RH (1991). Аналитические и графические методы определения пектина (Глава 10). В: Вальтер Р.Х. (ред.) Химия и технология пектина. Academic Press, San Diego

    CrossRefGoogle Scholar

54. 55.

    Quemener C, Marot C, Mouillet L, Da Riz V, Diris J (2000) Количественный анализ гидроколлоидов в пищевых системах с помощью метанолиза в сочетании с обратной ВЭЖХ.Часть 2. Пектины, альгинаты и ксантан. Пищевые гидроколлоиды 14:19

    CrossRefGoogle Scholar

55. 56.

    Kyriakidis NB, Psoma E (2001) Гидроколлоидные помехи в определении пектина методом карбазола. Журнал AOAC International 84: 1947

    PubMedGoogle Scholar

56. 57.

    Gordon DT (2007) Определения пищевых волокон под угрозой. Cereal Foods World 52: 112

    Google Scholar

57. 58.

    McCleary BV, Prosky L (eds) (2001) Передовая технология пищевых волокон, Blackwell Science, Лондон

    Google Scholar

58. 59.

    Аноним. (2001) Определение пищевых волокон. Cereal Foods World 46: 112

    Google Scholar

59. 60.

    Институт медицины, пищевых продуктов и питания Совета (2005 г.) Рекомендуемая диета: энергия, углеводы, клетчатка, жиры, жирные кислоты, холестерин, белок и аминокислоты. National Academies Press, Вашингтон, округ Колумбия

    Google Scholar

60. 61.

    Комиссия Кодекса Алиментариус, Продовольственная и сельскохозяйственная организация, Всемирная организация здравоохранения (2009 г.) Отчет 30-й сессии Комитета Кодекса по питанию и продуктам для особых диетических целей.

    http://www.codexalimentarius.net/download/report710/al132_26e.pdf

61. 62.

    Jones JM (2014) Определения пищевых волокон, согласованные с CODEX, помогают преодолеть «разрыв в клетчатке». Nutrition Journal 13:34

    CrossRefGoogle Scholar

62. 63.

    Juneja LR, Sakanaka S, Chu D-C (2001) Физиологические и технологические функции частично гидролизованной гуаровой камеди (модифицированные галактоманнаны). (Глава 30). В: McCleary BV, Prosky L (eds), Передовая технология пищевых волокон.Blackwell Science, Oxford, UK

    Google Scholar

63. 64.

    Austin S, Bhandari S, Cho F, Christiansen S, Cruijsen H, De GR, Deborde J-L, Ellingson D, Gill B, Haselberger P и др. (2015) Фруктаны в детских смесях и питательных смесях для взрослых / детей. Журнал AOAC International 98: 1038

    CrossRefGoogle Scholar

64. 65.

    Утвержденные методы AACC International (онлайн). AACC International, Сент-Пол, Миннесота

    Google Scholar

65. 66.

    Копикова Ю., Сынця А., Черна М., Каасова Ю., Новотна М. (2001) Применение ИК-Фурье спектроскопии для обнаружения пищевых гидроколлоидов в кондитерских желе и пищевых добавках. Czech Journal of Food Science 19:51

    CrossRefGoogle Scholar

66. 67.

    Chopin T, Whalen E (1993) Новый и быстрый метод идентификации каррагинана с помощью спектроскопии диффузного отражения FT IR непосредственно на высушенном измельченном материале водорослей. Исследование углеводов 246: 51

    CrossRefGoogle Scholar

67. 68.

    Cerna M, Barros AS, Nunes A, Rocha SM, Delgadillo I., Copikova J, Coimbra MA (2003) Использование ИК-Фурье спектроскопии в качестве инструмента для анализа полисахаридных пищевых добавок. Углеводные полимеры 51: 383

    CrossRefGoogle Scholar

68. 69.

    Tojo E, Prado J (2003) Химический состав смесей каррагинана, определенный с помощью ИК-спектроскопии в сочетании с методом многомерной калибровки PLS. Исследование углеводов 338: 1309

    CrossRefGoogle Scholar

69. 70.

    Prado-Fernandez J, Rodriguez-Vazquez JA, Tojo E, Andrade JM (2003) Количественное определение k-, ι- и λ-каррагинанов с помощью спектроскопии в среднем инфракрасном диапазоне и регрессии PLS. Analytica Chimica Acta 480: 23

    CrossRefGoogle Scholar

70. 71.

    Monsoor MA, Kalapathy U, Proctor A (2001) Определение содержания полигалактуроновой кислоты в экстрактах пектина с помощью инфракрасной спектроскопии с Фурье-преобразованием диффузного отражения. Химия пищевых продуктов 74: 233

    CrossRefGoogle Scholar

71. 72.

    Langkilde FW, Svantesson A (1995) Идентификация целлюлозы с помощью преобразования Фурье (FT) в среднем инфракрасном диапазоне, FT-Raman и ближней инфракрасной спектрометрии. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis 13: 409

    CrossRefGoogle Scholar

72. 73.

    Kays SE, Barton FE II (2002) Анализ в ближней инфракрасной области растворимых и нерастворимых фракций пищевых волокон зерновых пищевых продуктов. Журнал сельскохозяйственной и пищевой химии 50: 3024

    CrossRefGoogle Scholar

73. 74.

    Mehrübeoglu M, Coté GL (1997) Определение общих восстанавливающих сахаров в образцах картофеля с использованием спектроскопии в ближнем инфракрасном диапазоне. Cereal Foods World 42: 409

    Google Scholar

Информация об авторских правах

© Springer International Publishing 2017

Открытый доступ Эта глава находится под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial 2.5 International License (http: // creativecommons .org / licenses / by-nc / 2.5 /), который разрешает любое некоммерческое использование, совместное использование, адаптацию, распространение и воспроизведение на любом носителе или любом формате, при условии, что вы надлежащим образом укажете автора (авторов) и источник, предоставьте ссылку на лицензию Creative Commons и укажите, были ли внесены изменения.

Изображения или другие материалы третьих лиц в этой главе включены в лицензию Creative Commons для этой главы, если иное не указано в кредитной линии для материала. Если материал не включен в лицензию Creative Commons этой главы и ваше предполагаемое использование не разрешено законодательными актами или превышает разрешенное использование, вам необходимо получить разрешение непосредственно от правообладателя.

Авторы и аффилированные лица

1. 1. Кафедра пищевых продуктов Университета Пердью Вест-Лафайет, США

Анализ углеводов — обзор

Полисахариды, полученные ботаническим путем, в качестве адъювантов вакцин

Углеводные структуры также играют важную роль в иммунной системе. высокие показатели безопасности и переносимости.Ряд углеводных соединений из растительных, бактериальных, дрожжевых и синтетических источников оказались многообещающими кандидатами в вакцины в качестве адъювантов. Одним из первых полисахаридов, обладающих иммунологическим действием, был β-d- (2-1) поли (фрукто-фуранозил) β-d-глюкоза, более известный как инулин, естественный запасной углевод растительного происхождения различных растений, который также продуцируется микроорганизмами семейства Aspergillus и Streptococcus mutatis .

Инулин представляет собой полимер, содержащий линейные цепи фруктозильных групп, связанных β (2-1) гликозидными связями, оканчивающимися на восстанавливающем конце кольцевой группой α-d- (1-2) -глюкопиранозида.Иммунная активность инулина была впервые идентифицирована как активация белков комплемента неклассическим путем. Гамма-инулин нетоксичен для нескольких видов животных, включая человека, и не является пирогенным. Его первичная химическая структура полностью известна, он недорог, легкодоступен, прост в обращении и производстве. Комбинация квасцов и гамма-ИН также регистрируется как альгаммулин и является мощным усилителем пути иммунного ответа Th2, повышая скорость сероконверсии и иммунологическую память в защитных классах антител и усиливая клеточно-опосредованный иммунитет.Их первичными мишенями in vivo, вероятно, являются лимфоциты, а не макрофаги. Адъюванты на основе гамма-инулина, таким образом, включают новых, безопасных, эффективных и привлекательных кандидатов для усиления реакции на человеческие и ветеринарные вакцины, особенно на вакцины, требующие клеточно-опосредованной защиты. Такие отчеты также вызвали интерес к ботаническим полисахаридам, поскольку ботанические и микробные полисахариды связываются с общими поверхностными рецепторами и вызывают аналогичные иммуномодулирующие реакции в макрофагах, предполагая, что эволюционно законсервированные структурные особенности полисахаридов являются общими для этих организмов (Schepetkin and Quinn, 2006).Таким образом, оценка растительных полисахаридов предоставляет уникальную возможность для открытия новых терапевтических агентов и адъювантов, которые проявляют полезные иммуномодулирующие свойства.

Исследования популярных иммуномодулирующих растительных средств показали, что полисахариды являются одним из ключевых компонентов, ответственных за иммуномодулирующую активность. Было обнаружено, что полисахариды астрагала (APS), экстрагированные из Astragalusmbranaceus , стимулируют пролиферацию Т-клеток и способствуют экспрессии поверхностных антигенов на лимфоцитах (Shao et al., 2004). Xu et al. исследовали влияние APS на фагоцитоз M. tuberculosis макрофагами. Их результаты показали, что APS не только усиливает фагоцитотическую активность макрофагов до M. tuberculosis , но также увеличивает секрецию цитокинов IL-1, IL-6 и TNF-α (Xu et al., 2007). Shao et al. сообщили, что макрофаги от мышей C3H / HeJ (мыши с мутацией TLR4) неспособны отвечать на стимуляцию APS, что свидетельствует о положительном участии TLR4 в APS-опосредованной активации макрофагов.Моноклональные антитела против TLR4 мыши частично ингибируют связывание APS с макрофагами, подразумевая, что существует прямое взаимодействие APS и TLR4 на поверхности клетки. Они также обнаружили, что APS может активировать В-лимфоциты и макрофаги мышей (Shao et al., 2004).

Полисахариды Radix glycyrrhizae (GPS), один из основных активных ингредиентов R. glycyrrhizae , приписывают многим целебным свойствам травы. Он состоит из рамнозы, глюкозы, арабинозы и галактозы.Из всех моносахаридных композиций глюкоза определяется как самый крупный химический компонент полисахаридов. В другом исследовании обработка DC с помощью GPS привела к усиленной экспрессии молекул клеточной поверхности CD80, CD86 и MHC I-A / I-E. Кроме того, использование ингибиторов TLR4, NF-κB, p38 MAPK и JNK частично подавляло действие GPS на DC. Эти результаты предполагают, что GPS индуцирует созревание и функцию DCs in vitro, которые частично регулируются посредством связанного с TLR4 сигнального пути.

Было показано, что полисахариды женьшеня обладают множественной иммуномодулирующей биологической активностью. Исследования показали, что гинсан, иммуномодулирующий полисахарид из Panax ginseng , индуцировал созревание ДК, увеличивая продукцию цитокинов макрофагами, увеличивая количество клеток костного мозга и усиливая гуморальный ответ антител.

Новый метод быстрого определения концентраций углеводов и общего углерода с помощью УФ-спектрофотометрии

Основные моменты

•

Наш метод является значительным усовершенствованием широко используемого метода фенол-серной кислоты.

•

Мы избежали опасностей для здоровья и окружающей среды, связанных с использованием фенола.

•

Мы разработали прямую корреляцию между поглощением УФ-излучения и общей концентрацией углерода.

•

Мы значительно сокращаем время ожидания перед измерением поглощения света.

•

Мы различаем поглощение нейтральных и анионных углеводов.

Реферат

Разработан новый метод на основе УФ-спектрофотометрии для определения концентрации и содержания углерода в растворе углеводов.Этот метод зависит от собственного потенциала УФ-поглощения побочных продуктов гидролиза углеводов, образующихся в результате реакции с концентрированной серной кислотой (производные фурфурола). Предлагаемый метод является большим усовершенствованием широко используемого метода фенол-серная кислота, разработанного Дюбуа, Жилем, Гамильтоном, Реберсом и Смитом (1956). Согласно старому методу фурфурол может приобретать цвет в результате реакции с фенолом, а его концентрация определяется по поглощению видимого света. Здесь мы представляем метод, который исключает стадию окрашивания и позволяет избежать опасности для здоровья и окружающей среды, связанной с использованием фенола.Кроме того, было показано, что отказ от этого шага повышает точность измерения при значительном сокращении времени ожидания перед измерением поглощения света. Углеводы, для которых можно надежно оценить концентрацию и содержание углерода с помощью этого нового быстрого метода серной кислоты – УФ, включают: моносахариды, дисахариды и полисахариды с очень высокой молекулярной массой.

Ключевые слова

Фенол-серная кислота

Углеводы

Фурфурол

УФ-метод

Рекомендуемые статьиЦитирующие статьи (0)

Полный текст

Copyright © 2013 Elsevier Ltd.Все права защищены.

Рекомендуемые статьи

Ссылки на статьи

Определение общего количества углеводов антроновым методом — Углеводы

Определение общих углеводов антроновым методом

Углеводы являются важными компонентами материалов для хранения и строения растений. Они существуют в виде свободных сахаров и полисахаридов. Базовыми единицами углеводов являются моносахариды, которые не могут быть расщеплены гидролизом на более простые сахара.Содержание углеводов можно измерить путем гидролиза полисахаридов до простых сахаров путем кислотного гидролиза и оценки полученных моносахаридов.

Принцип

Углеводы сначала гидролизуются до простых сахаров с помощью разбавленной соляной кислоты. В горячей кислой среде глюкоза дегидратируется до гидроксиметилфурфурола. Это соединение образует с антроном продукт зеленого цвета с максимумом поглощения при 630 нм.

Материалы

⇒ 2.5 н-HCl

• Антрон Реагент: Растворите 200 мг антрона в 100 мл ледяной 95% -ной H ₂ SO ₄ . Перед употреблением готовить в свежем виде.
• Стандартная глюкоза: Исходный раствор — Растворите 100 мг в 100 мл воды. Рабочий стандарт — 10 мл бульона, разбавленного дистиллированной водой до 100 мл. После добавления нескольких капель толуола хранить в холодильнике.

Процедура

1. Взвесьте 100 мг образца в трубку для кипячения.
2. Гидролизуют, выдерживая в кипящей водяной бане в течение 3 часов с 5 мл 2,5 N-HCl и охлаждая до комнатной температуры.
3. Нейтрализовать твердым карбонатом натрия до тех пор, пока не прекратится бурение.
4. Довести объем до 100 мл и центрифугировать.
5. Соберите супернатант и возьмите аликвоты 0,5 и 1 мл для анализа.
6. Приготовьте стандарты, взяв 0, 0,2, 0,4, 0,6, 0,8 и 1 мл рабочего стандарта. «0» будет пустым.
7. Довести объем до 1 мл во всех пробирках, включая пробирки для образцов, добавив дистиллированной воды.
8. Затем добавьте 4 мл реагента антрон.
9. Нагрейте в течение восьми минут на кипящей водяной бане.
10. Быстро охладите и прочитайте цвет от зеленого до темно-зеленого при 630 нм.
11. Нарисуйте стандартный график, отложив концентрацию стандарта на оси X в зависимости от оптической плотности на оси Y .
12. По графику рассчитайте количество углеводов, присутствующих в пробирке для образца.

Расчет

Количество углеводов, присутствующих в 100 мг образца = (мг глюкозы ÷ Объем исследуемого образца) X 100

Примечание

Охладите содержимое всех пробирок на льду перед добавлением ледяного реагента антрона.

Чтение

1. Хедж, Дж. Э. и Хофрейтер, Б. Т. (1962) В: Carbohydrate Chemistry 17 (Эдс Уистлер Р. Л. и Би Миллер, Дж. Н.) Academic Press New York.

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

---

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно.Ниже приведены наиболее частые причины:

• В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
• Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались.
  Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, используйте кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
• Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
• Дата на вашем компьютере в прошлом.Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г.,
  браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
• Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie.
  Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

---

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу.Чтобы предоставить доступ без файлов cookie
потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

---

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта.Например, сайт
не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к
остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

---

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно.Ниже приведены наиболее частые причины:

• В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
• Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались.
  Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, используйте кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
• Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
• Дата на вашем компьютере в прошлом.Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г.,
  браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
• Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie.
  Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

---

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу.Чтобы предоставить доступ без файлов cookie
потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

---

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта.Например, сайт
не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к
остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

Анализ углеводов в пищевых продуктах Labmate Online

В пищевой промышленности содержание углеводов и сахара играет важную роль в определении питательной ценности продуктов питания и напитков.Возможность количественного определения некоторых сахаров имеет большое значение, и Европейский Союз требует, чтобы пищевая ценность указывалась на всех пищевых продуктах (за исключением необработанных продуктов и сыпучих продуктов).

Углеводы — один из важнейших компонентов многих пищевых продуктов; они могут присутствовать в виде изолированных молекул или быть физически ассоциированными или химически связанными с другими молекулами. Сахар — это простые углеводы, важные для повседневной жизни.

Многие сахарные спирты используются в кондитерских изделиях, потому что они придают сладкий вкус без калорий, которые обычно содержат сахар.Сахарные спирты, такие как сорбит и маннит, являются обычными заменителями сахарозы, но их использование хорошо регулируется, поскольку они могут проявлять слабительные и мочегонные свойства. Моносахарид фруктоза — самый сладкий сахар, который можно найти в природе, например, в сладких фруктах и ​​меде, поэтому также важно определять и контролировать его присутствие. Точно так же лактоза является важным дисахаридом, который содержится во многих молочных продуктах, и важно измерять и регулировать его содержание и представляет особый интерес для людей, которые могут иметь непереносимость лактозы.

Ионная хроматография (IC) с импульсным амперометрическим детектированием (PAD) от Metrohm может использоваться для количественного определения важных углеводов — с большей чувствительностью по сравнению с системами жидкостной хроматографии (ЖХ), использующими определение индекса преломления (RI).

Матрица образцов часто может создавать проблемы перед анализом, чтобы привести образец в подходящую форму для тестирования. Часто лаборатории, анализирующие различные типы пищевых продуктов, имеют исторические процедуры подготовки проб, которые мы можем использовать, а затем небольшое количество пробы можно быстро ввести с помощью Metrohm 940 Professional Vario IC с охлаждаемым центром пробоотбора 889 IC, особенно подходящим для больших объемов проб.Там, где нет действующей методологии пробоподготовки, Metrohm может предложить автоматическую поточную технику пробоподготовки, такую ​​как ультрафильтрация или диализ, полезные при анализе молочных продуктов.

Metrohm предлагает гибкий подход к выбору колонок, и в случае существующих методологий с оборудованием Metrohm можно использовать колонки сторонних производителей, копируя существующие рабочие процедуры с точки зрения профиля градиента и электрохимических параметров.Кроме того, у Metrohm есть собственные колонки для углеводов большой емкости, которые можно использовать там, где нужно разработать новый метод или усовершенствовать существующий. Каждый проданный прибор Metrohm IC поддерживается специальной группой послепродажной поддержки, чтобы обеспечить беспроблемную установку клиентского приложения.